Legfontosabb > Táplálás

Allergiás módszer fertőző betegségek diagnosztizálására

Allergiás diagnosztika, allergiás diagnosztikai tesztek, fertőző és invazív betegségek diagnosztizálása olyan reakciók felhasználásával, amelyek feltárják a test sejtjeinek és szöveteinek fokozott érzékenységét a specifikus fertőző allergénekkel szemben. A fertőzött szervezet az allergén bejutására (a bőrbe, a bőr alá, a nyálkahártyákra) allergiás reakcióval reagál, amely helyi (hiperemia, ödéma, fájdalom) vagy általános (depresszió, láz, gyors légzés, károsodott szívműködés) jelenségként alakul ki. Allergén bejuttatása egy nem fertőzött szervezetbe nem okoz ilyen reakciókat. Gyakorlati érték Az allergiás diagnosztika magas érzékenységet és specifitást, valamint végrehajtásának egyszerűségét tartalmazza; lehetővé teszi a fertőzött állatok kimutatását a betegség klinikailag kifejezett jeleinek hiányában. Az allergiás diagnosztikát a kórokozók, tuberkulózis, brucellózis, paratuberculosis enteritis, tularemia, epizootikus lymphangitis, toxoplasmosis, echinococcosis esetén használják. Lásd még: Allergia..

Allergiás módszer fertőző betegségek diagnosztizálására

AZ ALERGIS BETEGSÉGEK DIAGNOSZTIKAI MÓDSZEREI

Az allergiás betegségek diagnosztizálásában óriási szerepet játszik az etiológiai szempontból jelentős allergén kiderítése. A mai napig az azonosított allergének spektruma nagyon széles. Az alábbiakban az ismert és klinikailag szignifikáns allergének csak egy részét mutatjuk be..

Az allergéneket antigéneknek és hapténeknek nevezzük, amelyek allergiás reakciót válthatnak ki..

Két nagy allergéncsoportot különböztetünk meg: nem fertőző és fertőző.

A nem fertőző allergének közé tartoznak: pollen, élelmiszer, háztartási, epidermális, rovar-, gyógyszer- és ipari allergének.

Ezek növényi allergének, amelyek szénát okoznak. Az allergén pollen az összetételét alkotó fehérjéknek köszönhető. A pollen allergének több csoportja van:

1) a gabonafű pollenének allergénjei: timothia, a nemzeti csapat sündisznói, lófarok, búzafű, bukfű, ecet és mások;

2) gabonából származó pollen allergének: zab, búza, árpa, rozs, kukorica;

3) a termesztett növények pollen-allergénjei: cukorrépa, lóhere, sóska, napraforgó stb.;

4) fa pollen allergének: tölgy, juhar, éger, mogyoró, nyír, nyár, rezgő, fenyő, luc, fenyő, stb.;

5) gyompollen allergének: pitypang, parlagfű, útifű, csalán, üröm, hattyú stb.;

6) gyümölcsfákból származó allergének pollenjei: almafák, cseresznye, körte stb.;

7) allergének pollen kerti virágok: százszorszépek, rózsa, tulipán, nárcisz, liliom stb..

Ezek lehetnek bármilyen élelmiszer-ipari termék vagy anyag, amely az emésztés, főzés vagy hosszú távú tárolás során képződik. Az élelmiszer-allergének két nagy csoportra oszlanak:

1) kötelező az 1. csoport allergének: kávé, kakaó, csokoládé, citrusfélék, eper, eper, csirketojás, csirkehús, méz, hal, kaviár, rákok, rákok;

2) kötelezze 2 csoport allergénjeit: tej, sárgarépa, répa, paradicsom, hajdina stb..

Allergének a házpor, a tollpárnák és a könyvtárpor.

A házpor-allergén összetétele nagyon változatos. Ide tartoznak állati, növényi eredetű anyagok, gombák, rovarok, baktériumok hulladékai. A házpor fő alkotóeleme a Dermatophagoides nemhez tartozó atka, amelyek októberben és március-áprilisban különösen aktívak..

Ezek a házpor részét képezhetik, és önálló értékkel bírhatnak az allergiás betegségek klinikai képének kialakításában. Ide tartoznak: emberi korpásodás, ló, sertés; Kutya, macska, nyúl, tengerimalac, egér, juh, kecskeszőr stb..

Ezek rovar allergének, amelyek megtalálhatók a nyálukban, méreganyagukban és testükben. Allergiás reakció fordul elő, ha szűkül a hymenoptera; diptera harapások és ágyneműk; érintkezésben a Lepidoptera szekrécióival és testrészeivel.

Ezek kémiai, enzimkészítmények és gombás szintézis termékek. A gyógyszerek elsősorban haptének, amelyek valódi allergénekké válnak, csak hordozófehérjével konjugálva.

Ezek a környezet kémiai és biológiai szennyeződései. A vegyi anyagok között az allergének a következők: fémek és sóik, peszticidek, szintetikus polimerek. Munkahelyi allergiás betegségeket okoznak..

A fertőző allergének közé tartoznak a baktériumok, vírusok, gombák, protozoák és helminták allergének.

Ezek a baktériumsejtek különféle összetevői lehetnek. Mivel a baktériumsejt szerkezete összetett, és még mindig nem tisztázott, hogy mely anyagok túlnyomó részben allergének, az egyes baktériumkomponensek allergén hatásai különböző betegekben változhatnak.

A vírus allergének késleltetett és azonnali allergiát okoznak. A vírusokkal szembeni allergiát intradermális tesztekkel és in vitro tesztekkel határozzák meg..

Nagyon sok gombafaj ismert a világon, amelyek képesek az emberi test érzékenyítésére. A szokásos allergének csak 100 gombafajtából készülnek..

Ezek Ascaris, echinococcus, trichinella allergének. Lárváik leginkább allergén termékei egy felnőtthez képest.

4.2 In vivo diagnosztikai módszerek.

Az allergiás betegségek diagnosztizálására szolgáló in vivo módszerek a következők:

1. Allergiás kórtörténet.

3. Provokatív tesztek.

4.2.1 Allergiás kórtörténet.

A diagnózis első szakaszában elsődleges fontosságú a helyes allergológiai kórtörténet..

Az allergiás kórtörténet feladatai a következők:

1. A betegség allergiás jellegének, nosológiai formájának megállapítása.

2. Etiológiailag jelentős allergén becsült kimutatása.

3. Az allergiás betegség kialakulását elősegítő kockázati tényezők azonosítása:

1) örökletes hajlam;

2) környezeti hatás:

a) éghajlat, időjárás, fizikai tényezők;

4. Az egyidejű patológia azonosítása.

5. A beteg többi allergiás betegségének azonosítása.

6. A háztartási tényezők befolyása (zsúfolás, háziállatok, madarak, nedvesség a szobában, kárpitozott bútorok, szőnyegek stb.).

7. A súlyosbodások összekapcsolása más betegségekkel (gyomor-bélrendszer, endokrin rendszer, központi idegrendszer).

8. A foglalkozási veszélyek hatása.

9. A betegség összekapcsolása az élelmiszer-bevitellel.

10. Az antiallergikus szerek alkalmazásának és (vagy) az allergén eliminációjának klinikai hatásának értékelése.

A gyermekeken végzett anamnézis gyűjtésekor először figyelembe kell venni a következő tényezőket:

1. Az anatómiai periódus jellege a lehetséges intrauterin szenzibilizáció meghatározása céljából.

2. A méhen belüli hipoxia jelenléte, amely hozzájárulhat a magzati korai szenzibilizációhoz.

3. A csecsemő etetésének jellege és a szoptató anya étrendje.

4. A kiegészítő ételek, kiegészítő ételek, gyümölcslevek bevezetésének ideje, mennyisége és sokszínűsége.

Az anamnézis elemzésével fontos tisztázni a betegség kialakulásának idejét, amely feltehetően etiológiai szempontból jelentős tényezőt jelezhet, nevezetesen: 2-3 éves korban az ételallergia dominál gyermekeknél, aztán háztartási allergia csatlakozik, és a bakteriális pollen 5-7 évvel.

Így a diagnózis első szakaszában nemcsak a betegség nosológiai formáját lehet megállapítani, hanem annak etiológiáját is fel lehet tüntetni.

4.2.2. Bőr tesztek.

A következő típusú bőrtesztek különböznek egymástól:

1. Bőr (csepegés, felhordás stb.).

3. Vizsgálati injekció (prik teszt).

A bőrvizsgálat megválasztása a betegség javasolt etiológiájától, a beteg szenzibilizációjának fokától és a folyamat stádiumától függ..

A bőrvizsgálat indikációi anamnézis adatok, amelyek jelzik egy adott allergén vagy allergének csoportját a betegség kialakulásában.

A bőrvizsgálat ellenjavallata:

1) egy allergiás betegség akut fázisa;

2) az egyidejű krónikus betegségek súlyosbodása;

3) akut intercurrent fertőző betegségek;

4) tuberkulózis és a tuberkulin minták fordulása;

5) dekompenzált állapotok a szív, máj és vesék betegségeiben;

6) vérbetegségek, rák, szisztémás és autoimmun betegségek;

7) antihisztaminokkal és membránstabilizátorokkal, hormonokkal, bronchospasmolitikumokkal végzett kezelés időtartama;

8) konvulzív szindróma, idegi és mentális betegségek;

9) terhesség, szoptatás, a menstruációs ciklus első 2-3 napja;

10) életkor 3 év;

11) anafilaxiás sokk, Lyell-szindróma, Stevens-Johnson története.

1. Csepegtető minta.

Magas szenzibilizációra használják, különösen vegyi anyagok és néha drogok ellen.

Technika: az alkar bőrének zsírtalan hajlító felületére egy csepp allergént alkalmazunk, kontrollként párhuzamosan egy csepp oldószert. 20 perc elteltével értékelje.

Cseppminta besorolása

Eredmény ¦ Feltételes ¦ Helyi bőrreakció

negatív ¦ - ¦ megfelel a kontrollnak

kétes ¦ + - ¦ enyhe hyperemia

test ¦ + ¦ hyperemia + viszketés

pozitív ¦ ++ ¦ hyperemia + viszketés +

2. Alkalmazási teszt.

Foglalkozási allergiák, kontakt dermatitisz diagnosztizálására szolgál.

Beállítási technika: Az alkar rugalmassági felületén, 700 alkohollal előkezelve, a márkát allergénoldatban áztatják, és a marbellával párhuzamosan oldószerrel. 30 perc elteltével értékelje.

A bőrfelület-teszt értékelése

Eredmény ¦ Feltételes ¦ Helyi bőrreakció

negatív ¦ - ¦ megfelel a kontrollnak

pozitív ¦ ++ ¦ hyperemia + hólyag

pozitív ¦ +++ ¦ hyperemia + hólyag +

Ijesztő bőrvizsgálatok.

Segítségükkel azonosítják az okozati szempontból jelentős allergén és az ahhoz való érzékenység mértékét. Ezeket az összes nem fertőző allergénkel elvégzik. Ugyanakkor legfeljebb 10-15 mintát lehet szállítani, és nagy érzékenység esetén az egyik név allergén mennyisége korlátozott (4-5 sorozat d / p).

Az alkar hajlítófelületének bőrét 70 alkohollal kezeljük, majd külön fecskendőkkel, csepp 0,01% hisztaminnal, allergénekkel és tesztfolyadék-kontrollral 4-5 cm-re egymástól alkalmazzuk. A steril olló minden egyes cseppnél 2 és 4 mm vastagságú, egymástól 2 mm távolságban lévő karcolást hajt végre külön-külön..

Öt éves kor alatti gyermekeknél egy karcolás elvégezhető. A karcolások felületesen történnek, csak az epidermisz integritását sértik, anélkül, hogy az erek megsérülnének. 10 perc elteltével óvatosan fújja meg az egyes cseppeket külön vattacsomóval, további 10 perc múlva értékelje a mintákat.

Előfeltétel a negatív eredmény egy tesztkontroll folyadékkal és pozitív hisztaminnal..

A szarifikációs minta értékelése

Eredmény ¦ Feltételes ¦ Helyi reakció

reakciók ¦ megnevezések ¦ bőr

negatív ¦ - ¦ megfelel a kontrollnak

kétes ¦ + - ¦ hyperemia buborékcsomagolás nélkül

gyengén pozitív ¦ + ¦ buborékcsomagolás 2-3 mm-ig +

pozitív ¦ ++ ¦ buborékcsomagolás 5 mm-ig +

mérsékelt hyperemia

élesen ¦ +++ ¦ buborékcsomagolás 5-10 mm-ig +

pozitív ¦ ¦ hyperemia + álpodia

nagyon éles 10 ++++ ¦ buborékcsomagolás 10 mm felett +

pozitív pszeudopodia + hyperemia

A hegesedéses bőrvizsgálat értékelésekor figyelembe kell venni a teszt kontrollfolyadékával szembeni téves pozitív reakció lehetőségét. Ez történik olyan esetekben, amikor a bőr fokozottan érzékeny a mechanikai stresszre, valamint a teszt-ellenőrző folyadékban (fnol) szereplő komponensekre adott reakció esetén..

Az allergénekkel szembeni hamis pozitív reakciókat figyelünk meg a bőrvizsgálat (mély) felállításának technikájának megsértésével és a bőr mechanikai stresszre gyakorolt ​​fokozott érzékenységével szemben.

A hisztaminra vonatkozó hamis negatív reakciók lehetségesek a hisztamin iránti egyéni érzékenység csökkenésével, antihisztaminokkal vagy hormonokkal végzett kezelés során végzett bőrvizsgálat során. Ezenkívül hasonló eredmény érhető el hígított hisztamin hosszabb ideig történő tárolásakor..

Az állatokkal való hamis negatív tesztek lehetséges:

1) azonos típusú allergének (például házpor) teljes sorozatának hiányában;

2) az allergiás reakció másik mechanizmusa;

3) az allergének nem megfelelő tárolása;

4) az allergén bevezetésének technikájának megsértése (nagyon felületesen);

5) bőrvizsgálat elvégzése allergiás vagy súlyos szomatikus betegség súlyosbodása esetén;

6) antihisztaminok, membránstabilizátorok, hormonok, hörgőtágító szerek szedése.

Befecskendezési teszt (Prik-teszt).

Ezt a tesztet egy speciális tűtartó végzi, amelybe a tűt behelyezik. Ez lehetővé teszi az injekció mélységének beállítását, kiküszöböli a csepp összetörését az injekció beadásakor. Az értékelést ugyanúgy hajtják végre, mint a szarifikációs mintákat..

Az intradermális mintákat főként fertőző allergénekkel (bakteriális, gombás és egyéb) helyezzük, amelyekben a skarifikációs reakció nagyon gyenge..

Nem fertőző allergénekkel csak akkor végezhetők el, ha az alkalmazás vagy a szarikózási teszt negatív vagy kétes, és a történelem egyértelműen pozitív..

Beállítási technika: az alkar hajlító felületének vagy hátuljának bőrét 70 alkohollal kezelik, majd 0,02 ml nem fertőző allergént vagy 0,05–0,1 ml fertőző allergént injektálnak tuberkulin vagy inulin fecskendővel. Kontrollként teszt-kontroll folyadékot és hisztamin-skarifikáló oldatot intradermálisan injektálunk..

Mivel az intradermális tesztek érzékenyebbek a skarifikációs tesztekhez képest, az intrakután bejuttatott allergénnek tízszeresen alacsonyabb koncentrációnak kell lennie, mint a szarbonizálási vizsgálat során..

Az intradermális teszt azonban kevésbé specifikus és gyakran hamis pozitív eredményeket ad; ezenkívül nemkívánatos szövődményeket válthat ki. Mivel az intradermális tetration során ez az allergének száma nem haladhatja meg a 4-5-et.

Az intradermális teszt értékelése

Eredmény ¦ Feltételes ¦ Helyi reakció ¦ Reakció

reakciók ¦ megnevezések ¦ a bőrön keresztül történő késleltetés-

¦20 perc ¦ típus

negatív ¦ - ¦ megfelel-

kétes ¦ + - a verseny késése ¦ gyenge

Lis ¦ hólyagosodás ¦ nélkül

gyengén pozitív ¦ + ¦ buborékcsomagolás 4-8 mm ¦ hyperemia

¦ ¦ szűrlettel körülvéve

¦noy hyperemia ¦ rum 5-10

pozitív ¦ ++ ¦ buborékcsomagolás 9-15mm

közepes ¦ ¦ körül

Hy új hyperemia ¦ 11-15 mm

élesen ¦ +++ ¦fúj 16-20mm¦

pozitív p álnév-hulladékkal

¦ lekerekített gyűrű - ¦ 16-20 mm

nagyon éles ¦ ++++ ¦ buborékcsomagolás> 20 mm ¦

pozitív p álnév-hulladékkal

4.2.3 Provokációs tesztek.

A provokatív tesztek egy megbízhatóbb diagnosztikai módszer, amely lehetővé teszi a sokk szerv érintkezését az allergénrel. Ezeket akkor használják, ha a bőrpróba és a bőrvizsgálat eredményei között nincs különbség..

Az allergén típusától és a testbe jutásának módjától függően a következő provokatív teszteket kell megkülönböztetni: nazális, kötőhártya, inhalációs, szublingvális, orális. A viselkedésük ellenjavallata megegyezik a bőrteszttel.

Háztartási, epidermális, pollen, bakteriális allergénekkel végezzük allergiás rhinosinusitis, tracheitis, hörghurut, remissziós hörgő asztma diagnosztizálására.

Az inhalációs teszt fő indikációi: etiológiailag szignifikáns allergének azonosítása; a kábítószer-kezelés hatékonyságának értékelése; a hörgőgörcsöt okozó nem-specifikus tényezők azonosítása; a beteg szakmai alkalmasságának meghatározása (latens hörgőgörcs kimutatása).

Háztartási, epidermális, pollen, bakteriális allergénekkel 4-5 éves kortól végezzük, az orrvizsgálat negatív eredményével vagy az anamnézis adatainak a bőrteszt eredményeivel való eltérésével (az inhalációs teszt elszámolására szolgáló forma, lásd a 4.1. Függeléket)..

Ez a teszt az élelmiszer- és gyógyszer-allergia diagnosztizálására szolgál. Allergént alkalmaznak a nyelvi terület alatt lévő nyálkahártyára. Élelmiszer-allergia esetén 1:10 hígítású természetes termékeket, drog allergia esetén - 1 / 8-1 / 4 oldott anyag egyetlen adagját használják. A teszt akkor tekinthető pozitívnak, ha hyperemia, duzzanat, viszketés, megnövekedett pulzus, bőrkiütés, tüsszentés és köhögés jelentkezik a szublingvális régióban (egy nyelvi teszt regisztrációs nyomtatványa, lásd a függeléket. 4.2. Táblázat).

Ezt a tesztet használják élelmiszer-allergia diagnosztizálására. Mivel az allergének természetes termékeket használnak. A teszt előtt 2-3 nappal a tesztterméket kizárják a táplálkozásból. Ezt a terméket ezután bevezetik az étrendbe, felmérve a sokk szerv általános állapotát és állapotát.

A teszt akkor tekinthető pozitívnak, ha a sokk szervének reakciója 1 órán belül megtörténik (az orális vizsgálat értékelésére szolgáló forma, lásd a függeléket. 4.3. Táblázat).

4.3. In vitro diagnosztikai módszerek

Jelenleg az allergiás betegségek diagnosztizálására szolgáló laboratóriumi módszereket nagyon széles körben használják, mert Számos előnyeik vannak. Különösen számos közülük említhető:

1) a kutatás lefolytatásának lehetősége korai gyermekkorban (legfeljebb 2-3 év);

2) a kutatások elvégzésének lehetősége allergiás betegség súlyosbodásakor és magas fokú szenzibilizáció esetén.

3) a többértékű szenzibilizáció azonosítása, ha nem lehetséges azonnal elvégezni in vivo tesztet az összes feltételezett allergénkel, és a vizsgálati idő korlátozott;

4) a megváltozott bőrreaktivitással történő vizsgálat lehetősége (hamis pozitív vagy hamis negatív eredmény a bőrtesztnél);

5) biztonság a beteg számára, as nem okoz további szenzibilizációt.

6) nagyszámú gyógyszerrel és más vegyi anyaggal egyszerre történő vizsgálat.

Számos kézikönyv és kézikönyv meglehetősen részletesen leírja az in vitro diagnosztikai teszteket..

Ezeknek a módszereknek a rövid felsorolása korlátozódik: radioaktív allergének vizsgálata (RAST) a vér szérumában található különböző allergének specifikus IgE antitesteinek meghatározására; PRIST módszer az összes IgE meghatározására; Shelley-teszt (közvetlen, közvetett), hízósejt-degranulációs teszt (Schwartz-teszt), ELISA, leukocytolysis reakció, neutrofilkárosodás-teszt, RTML, RBTL, E-ROCK allergénekkel stb..

Az in vitro allergiadiagnosztika modern módszereinek részletes leírása a FNN Fedoseeva, G.V.Poryadin, Kovalchuk L., V.V. Cheredeyev, V.Yu. kézikönyvében található. Kogana, 1993.

Specifikus és nem specifikus módszerek allergiás betegek vizsgálatára

A cikk felsorolja az allergia diagnosztizálásának a modern orvostudományban alkalmazott módszereit..

Fizikális vizsgálat

Ide tartozik a páciens vizsgálata, tapintás, auskultation (a szervek munkáját kísérő hangok hallgatása) és ütés (hangok hallgatása, amikor a páciens testét bizonyos területeken megérinti).

Az allergiák laboratóriumi diagnosztizálása

Az allergia diagnosztizálására szolgáló laboratóriumi módszer a betegtől elvégzett elemzések alapján meghatározza a test állapotát. A legtöbb módszer ELISA-on (enzimhez kapcsolt immunszorbens vizsgálaton) alapul - egy specifikus antigén-antitest reakción. Az ELISA módszer többszörös kemilumineszcencián és immunfluoreszcencián alapszik az ImmunoCAP készülékén.

Vérkémia

Vizsgálja a belső szervek és rendszerek állapotát, a gyulladásos folyamatok jelenlétét, meghatározva a vér kémiai összetételét.

Allergia szűrés

A vizsgálat tárgya a vérszérum. ELISA teszteket végeznek az allergének fő csoportjaira. A módszer lehetővé teszi a bűnös allergén keresésének szűkítését.

A specifikus IgG meghatározása

A tárgy vérszérum. Az ELISA IgG tesztet különálló antigénekkel hajtják végre a tettes allergén pontos azonosítása érdekében.

Javallatok: élelmiszer-allergia és intolerancia diagnosztizálása.

  • 50 U / ml - az eredmény negatív;
  • 50 - 100 U / ml - a tolerancia gyenge megsértése;
  • 100 - 200 U / ml - a tolerancia mérsékelt megsértése;
  • több mint 200 U / ml - súlyos károsodott tolerancia.

Specifikus IgE antitestek vizsgálata

Az IgE antitestek felelősek az azonnali reakciókért. ELISA-val határozzák meg a vér szérumában. Allergiát okozó anyag kimutatva.

Javallatok: az allergén azonosításának képessége anamnézissel, a bőrvizsgálat megtagadása, szisztémás reakciók anamnézise, ​​dermatitis, a bőr hipo- és hiperaktivitása, antitestek mennyiségi meghatározása, IgE-függő élelmiszer-allergia.

A vért az ulnara véna veszi. Néhány nappal a véradás előtt az étrendből és az állatokkal való érintkezésből származó allergén termékek kizártak, az antihisztaminok leállítása megtörténik. Az analízist remisszióban végezzük, a vért üres gyomorból veszik..

Az lgE normál (referencia) értéke a vérben kevesebb, mint 0,35 NE / ml

IgE-függő allergia kimutatása esetén az allergén-specifikus immunterápia indokolt.

Vérgáz-elemzés

Meghatározza a pH-t, az O2 és a CO2 parciális nyomását, valamint a bikarbonát mennyiségét a beteg vérében.

Hormonális profilkutatás

A vérben megmérik a mellékvesekéreg hormonszintjét.

vizeletvizsgálat

A vizelet fizikai és kémiai tulajdonságait értékelik: szín, átlátszóság, sűrűség, savasság, kémiai összetétel. Az üledék meghatározza a hám, a vörösvértestek, a fehérvérsejtek, a baktériumok jelenlétét.

Coprogram

Élelmiszer-allergia diagnosztizálására használják.

A székletmintákat megvizsgáljuk: makroszkopikusan (mennyiség, alak, szín, szag, textúra, genny, nyálka, vér, emésztetlen ételek, paraziták), mikroszkopikusan (keményítő, rost, lipidek, emésztett élelmiszermaradványok, bélnyálkahártya-sejtek, mikroflóra, kötő- és izomszövet ), kémiailag (pH, vér, epe pigmentek, fehérjék).

Általános köpet-elemzés

A légzőszervi allergiák diagnosztizálására alkalmazzák. Megvizsgáljuk a mennyiséget, állagot, színt, szagot, karaktert (nyálka, genny, vér, serozus folyadék), növény- és formájú elemeket.

Parazitológiai vizsgálatok

A tárgy vér vagy széklet. Felismeri a testben élő parazitákat vagy ellenanyagokat.

Reumatológiai tesztek

A tárgy vér. A reumatológiai faktor, a fibrinogén, a C-reaktív protein és az antistreptolizin szintjét elemezzük. A módszer lehetővé teszi a kötőszövet jelenlétének, lokalizációjának és gyulladásának forrásának meghatározását.

Virológiai vizsgálatok

Tárgyak: vér, széklet, köpet, cerebrospinális folyadék. Meghatározzák a vírusok jelenlétét a testben..

A nyálkahártyán és a bőrön lévő köpet és más váladékok bakteriológiai vizsgálata

A mintát tápláló tápközegbe vetettük, majd a tenyésztelepek ezt követő elemzésével végeztük. Lehetővé teszi a fertőző kórokozók azonosítását és számszerűsítését.

Az orrüreg, a kötőhártya nyálkahártyájának szekrécióinak, kenetének vagy tamponának citológiai vizsgálata

A módszer egy mintában lévő sejtek mikroszkóp alatt történő megvizsgálását foglalja magában morfológiai patológiáik és elváltozásaik, valamint okaik azonosítása céljából..

Specifikus allergológiai vizsgálati módszerek

Az allergia diagnosztizálásának ezen módszercsoportját a betegen hajtják végre, és célja az allergiát okozó ágensek azonosítása..

Bőrvizsgálatok (hegesedés)

Megvizsgálják a bőrrel való allergénre adott helyi reakciót..

A következő típusú bőrvizsgálatok érhetők el:

    csepp: az allergénkészítmény csepp formájában kerül felvitelre az ép bőrön;

Példa cseppdiagnosztikára (növelhető)

  • felvitel vagy tapaszteszt: az allergén szövetet felviszik az ép bőrre;
  • hegesedés: allergén kerül bejuttatásra a bőr karcolásaival;
  • bőrön át: egy allergén készítményt fecskendővel fecskendeznek a bőrbe.
  • szúrópróba: az allergén beadására egy allergénkészítménnyel megnedvesített tűvel kerül sor.
  • Javallatok: anamnézis adatok, amelyek a betegség allergiás jellegét mutatják.

    Ellenjavallatok:

    A hamis eredmények okai:

    • A teszt technológiájának megsértése;
    • Az allergén készítmények nem megfelelő tárolása;
    • Csökkent a bőr reakcióképessége;
    • Antihisztaminok szedése.

    A pozitív eredmény a test szenzibilizációját jelzi, és az anamnézis eredményeivel egybeesik, következtetéseket vonnak le a betegség allergiás természetéről, eltéréssel, további teszteket végeznek.

    A Mantoux teszt pozitív eredményével elvégzik az oltás utáni és fertőző allergiák differenciáldiagnosztikáját, azaz meghatározzák, hogy mi okozta a helyi reakciót - Koch bacillusát vagy fertőzés nélküli antitesteket.

    A tesztet egy allergológus végzi az alkar bőrére helyezett allergén oldatok felhasználásával. Legfeljebb 15 minta alkalmazható egyszerre.

    A MIR televíziós csatorna teleprészletének része - a gyermekek próbájának lefolytatása

    Eliminációs tesztek

    Néhány hétig a beteget kizárják a valószínű allergénekkel való érintkezésből, ami az általános állapot javulásához vezet. A kívánt allergénnek való kitettség folytatódásával a beteg ismét allergiás tüneteket mutat.

    Ily módon az allergiás reakciót okozó anyag pontosan meghatározható. A módszer a leghatékonyabb élelmiszer-, gyógyszer-allergia és kontakt dermatitisz esetén..

    Provokatív tesztek

    Allergent alkalmaznak a célszerv nyálkahártyájára, helyi allergiás reakció lép fel.

    Az allergia diagnosztizálásakor a következő típusú provokatív teszteket kell használni:

    • Orr (indikációk: polinózis, orrfolyás): allergén kerül az orrlyukba;
    • Kötőhártya: az allergén az alsó szemhéj alá kerül;
    • Szublingvális (élelmiszer-allergia): az allergén a nyelv alá kerül;
    • Belélegzés (javallatok: hörgőasztma): allergén gyógyszer aerosolt inhalálnak;
      • Carbacholin inhalációs teszt: a hörgő asztma diagnózisának megerősítése;
      • Hideg levegővel végzett inhalációs teszt: a nem specifikus hörgők túlreaktivitásának vizsgálata;
    • További allergológiai vizsgálati módszerek:
      • Duncan-teszt (hideg allergia esetén): tegyen egy darab jégot a bőrre 20 percre;
      • Hővizsgálat (termikus allergia esetén): egy üveg forró vizet (40 ° C) helyezünk az alkar bőrére 10 percre.

    Funkcionális módszerek az allergia diagnosztizálására

    Ezek lehetővé teszik a test fiziológiai rendszereinek munkájának értékelését munkájuk külső megnyilvánulásainak instrumentális mérésével.

    Az allergia diagnosztizálásakor a tüdő és a légzőrendszer munkáját értékelik:

    Csúcsáramlásmérő asztma esetén (növelhető)

    • Peakfluometria - a csúcsos légzési áramlás mérése;
    • Spirometria és spirográfia - megmérik a légzés sebességét és térfogatát;
    • Pneumotachometria - a légsebesség mérése kényszerített belégzés és kilégzés során.

    Műszeres vizsgálati módszerek

    Az allergiák diagnosztizálására szolgáló műszeres arzenál a következőket tartalmazza:

    • Elülső rhinoscopia: az orr nyálkahártya sérüléseinek diagnosztizálása.
    • Elülső rinomanometria: az orráthajlások szűkülését méri az orr allergiás hatása miatt.
    • Endoszkópos vizsgálatok: belső szervek vizsgálata endoszkóppal.

    A fenti tradicionális mellett alternatív módszerek vannak az allergia diagnosztizálására is.

    Alternatív módszerek az allergiás betegségek diagnosztizálására

    Ha egy allergiás betegség jellegtelen tünetekkel nyilvánul meg, vagy a diagnózist a hagyományos módszerek bonyolítják, akkor keresse meg az allergia diagnosztizálásának alternatív módszereit.

    Leukocitotoxicitási vizsgálat

    Meghatározzuk a specifikus antigént hordozó leukociták számát. Az antigén jelenlétét a fehérvérsejt megjelenésének megváltozása határozza meg, amikor az egy feltételezett allergénre reagál.

    Allergológiai teszt IgG kimutatására ELISA-ban

    Az allergiás ágensek kimutatására és az élelmiszer-intolerancia diagnosztizálására használják..

    Úgy néz ki, mint egy vegetatív rezonancia vizsgálat elvégzése (növelhető)

    VEGA tesztelés (elektrodermális tesztelés) Foll módszer (Voll)

    A test elektromágneses vezetőképességének vizsgálata. A csökkent vezetőképesség allergiás folyamatot jelez..

    Hajvizsgálat és allergia tesztelés

    A szervezet nyomelemeinek tartalmát méri. Néhányuk hiánya hozzájárul az allergiához..

    Auriculocardialis reflex

    Felmérjük az pulzusszám és az allergénnel érintkezõ vérellátás változásait..

    A félreérthetetlen diagnózishoz az allergológus a vizsgálat során a felsorolt ​​módszerek közül többet alkalmaz az allergia diagnosztizálására.

    A "Hello, doktor!" Program. Az allergiák molekuláris diagnosztizálásának modern módszerei

    Az allergiás betegségek diagnosztizálásának alapelvei

    A hivatalos statisztikák szerint hazánkban a lakosság 10-15% -a szenved allergiás betegségekkel. A valódi előfordulási arány azonban sokkal magasabb, mivel a lakosság vonzereje az allergiahelyiségekbe fejlett betegség esetén fordul elő, de a betegség korai tünetei gyakran észrevehetetlenek. Az allergiás betegségek világszerte elterjedt és folyamatos növekedése, valamint a diagnosztikai hibák jelentős százaléka azt sugallja, hogy a gyakorlati orvosoknak meg kell ismerkedniük az allergiás betegségek diagnosztizálásának modern módszereivel, az allergopatológia korai felismerése, ezen állapotok időben történő kijavítása és megelőzése céljából..
    Az allergiás betegségek diagnosztizálása célja az allergiás betegségek kialakulásához, kialakulásához és progressziójához hozzájáruló okok és tényezők azonosítása. Erre a célra specifikus és nem-specifikus vizsgálati módszereket alkalmaznak..
    Ez a diagnózis mindig a panaszok gyűjtésével kezdődik, amelyek jellemzői gyakran előzetes diagnosztizálást, a beteg életkorának és betegségének adatainak összegyűjtését és elemzését sugallják..
    A klinikai, nem specifikus vizsgálati módszerek közé tartozik az orvosi vizsgálat, a klinikai és laboratóriumi vizsgálati módszerek, a radiológiai, műszeres, funkcionális vizsgálati módszerek és mások indikációk szerint.

    1. táblázat: Az alkalmazott bőrteszt értékelési skála

    Bőrváltozások kísérik

    Az eritéma jelenléte ödéma nélkül

    Vörösödéma és ödéma az alkalmazás helyén

    Az alkalmazás helyén eritéma, ödéma, papulák, elszigetelt vezikulák

    Nagyon élesen pozitív

    Az alkalmazás helyén hyperemia, ödéma, papulák, egyesülő vezikulák

    Enyhe bőrpír, ödéma nélkül

    2. táblázat: A skarifikációs bőrminták értékelése

    Méretek, mint a hígítófolyadékkal történő ellenőrzésnél

    2-3 mm átmérőjű hólyag hyperemia esetén, csak a bőr húzásakor észlelhető

    Hyperemia által körülvett, legfeljebb 5 mm átmérőjű hólyag észlelhető a bőr nyújtása nélkül

    Legfeljebb 10 mm átmérőjű buborékcsomagolás hyperemia és ál állatok esetén

    Nagyon élesen pozitív

    10 mm-nél nagyobb átmérőjű buborékfóliák hyperemia és ál állatokkal

    A hegesedés helyén hiperemia hólyag nélkül

    3. táblázat. A skálaértékelés prik-tesztjei

    Méretek, mint a hígítófolyadékkal történő ellenőrzésnél

    A 3-5 mm átmérőjű buborékcsomagolás hyperemia-ig 10 mm-ig csak akkor észlelhető, ha a bőrt húzza

    5–10 mm átmérőjű buborékcsomagolás, hiperemia zónájával körülvéve, 5–10 mm átmérőjű

    10-15 mm átmérőjű buborékcsomagolás, hyperemia zónával körülvéve, 10 mm-nél nagyobb átmérővel

    Nagyon élesen pozitív

    Több mint 15 mm átmérőjű buborékcsomagolás ál állatokkal, 20 mm-nél nagyobb átmérőjű hyperemia-val

    Hyperemia jelenléte hólyag nélkül

    4. táblázat: Az intradermális tesztek skálabecslése

    Helyi bőrreakció 20 perc elteltével

    Késleltetett reakció 24–48 óra után

    A bőrreakció ugyanaz, mint a kontrollban.

    A bőrreakció ugyanaz, mint a kontrollban.

    4-8 mm-es buborékfólia, hiperemia körül

    Hyperemia, infiltráljon 5-10 mm átmérővel

    9–15 mm-es buborékfólia, hiperemia körül

    Hyperemia, 11–15 mm átmérőjű beszűrődni

    16–20 mm-es buborékfólia hiperémia által körülvett ál állatokkal

    Hyperemia, infiltrálódik 16–20 mm átmérőjű ál állatokkal, hyperemia veszi körül

    Nagyon élesen pozitív

    20 mm feletti hólyag, hiperemia által körülvett ál állatokkal

    Hyperemia, 20 mm-nél nagyobb átmérőjű infiltrátum ál állatokkal, lymphangitis, periférián fellépő buborékfóliák és fényes hyperemia

    Hyperemia a teszt helyén

    A minta helyén a buborékcsomagolás lassabban oldódik ki, mint a kontrollban

    Meghatározás
    Az „allergiás betegségek speciális diagnosztizálása” kifejezés olyan módszerkészletet jelent, amelynek célja az allergén vagy az allergének csoportjának azonosítása, amelyek provokálhatják az allergiás betegség kialakulását. Az allergiás betegségek specifikus diagnosztizálásának fő elve az allergiás antitestek vagy szenzibilizált limfociták, valamint az allergének (AH) és ellenanyagok (AT) specifikus kölcsönhatásának termékei kimutatása..
    A speciális allergológiai vizsgálat hatókörét az allergiás kórtörténet összegyűjtése után határozzák meg, és magában foglalja:

    • bőrpróbák;
    • provokatív tesztek;
    • laboratóriumi diagnosztika.

    Allergiás történelem gyűjteménye
    A helyes kórtörténet nagy, néha döntő jelentőségű az allergia diagnosztizálásában. Anamnézis összegyűjtésekor megvizsgálják azokat a tényezőket, amelyek hozzájárulnak e betegség kialakulásához.
    A beteg megkérdezésekor különös figyelmet kell fordítani a betegség első tüneteinek kialakulásának sajátosságaira, a manifesztációk intenzitására és időtartamára, kialakulásának dinamikájára, a korábbi diagnózis és kezelés eredményére, a beteg érzékenységére a korábban felírt gyógyszeres terápiás szerekkel szemben..
    Allergiás kórtörténet gyűjtésekor a következő feladatokat kell elvégezni:

    • a betegség allergiás jellegének, feltételezhetően nosológiai formájának megállapítása (az allergiás betegség egyik valószínű jele a világos kapcsolat fennállása a betegség kialakulása és annak egy bizonyos okozati tényezővel való megnyilvánulása között, a betegség tünetei eltűnése, ha megszűnik az ezzel a tényezővel való kapcsolat - a kiküszöbölési hatás - és a betegség megnyilvánulásainak folytatása gyakran kifejezettebb, ha feltételezett okozati tényezővel ismételt érintkezésbe kerülnek;
    • az etiológiai szempontból jelentős allergén feltételezett kimutatása;
    • az allergiás betegség kialakulásához hozzájáruló kockázati tényezők azonosítása;
    • genetikai hajlam kialakulása;
    • a környezeti tényezők (éghajlat, időjárás, fizikai tényezők) a betegség kialakulására és lefolyására gyakorolt ​​hatásának felmérése;
    • a betegség tüneteinek szezonalitásának azonosítása;
    • a háztartási tényezők (túlzsúfoltság, a helyiség nedvessége, kárpitozott bútorok, szőnyegek, háziállatok, madarak stb. jelenléte) a betegség kialakulásának és lefolyásának természetére gyakorolt ​​hatásainak azonosítása;
    • kapcsolat létesítése a betegség kezdete és annak súlyosbodása között az élelmiszerek és gyógyszerek lenyelésével;
    • az egyidejű szomatikus patológia azonosítása;
    • a beteg számára rendelkezésre álló egyéb allergiás betegségek azonosítása;
    • a foglalkozási veszélyek azonosítása;
    • az antiallergikus szerek alkalmazásának és / vagy az allergén kiküszöbölésének klinikai hatásának értékelése.

    Anamnézis összegyűjtésekor különös figyelmet kell fordítani a családi hajlamakra: olyan betegségek jelenlétére, mint például hörgőasztma, egész évben vagy szezonális nátha, ekcéma, urticaria, Quincke ödéma, élelmiszer-készítmények, gyógyszerek, vegyi vagy biológiai gyógyszerek intoleranciája. Ismeretes, hogy allergiás betegségben szenvedő betegek esetében az esetek 30–70% -ában súlyosbodó allergiás kórtörténet (azaz allergiás betegségek jelenléte rokonokban). Azt is meg kell vizsgálni, hogy előfordultak-e tuberkulózis, reuma, cukorbetegség, mentális betegségek a beteg családtagjai vagy közeli hozzátartozóik között.
    Ábra. 1. Az enzim immunoassay vázlata.

    Ábra. 2. A rádióallergén-szorbens teszt elvégzésének vázlata.

    Ábra. 3. A MAST-CLA teszt vázlata

    Ábra. 4. Az ELISA teszt vázlata

    Ábra. 5. A limfociták robbanásszerű transzformációjának reakcióvázlata

    Anamnézis gyűjtésekor meg kell jegyezni a betegség szezonalitásának jelenlétét vagy hiányát, a hideggel való kapcsolatát, az éghajlati, lakhatási vagy munkakörülmények megváltozását..
    A test különböző allergénekkel szembeni túlérzékenységének klinikai jellemzőinek ismerete gyakran döntő tényező a helyes diagnózishoz..
    Például, ha a beteg évenkénti fejlődést mutat ugyanabban az időszakban (tavaszi vagy nyári hónapokban), bizonyos növények beporzása (virágzása) időszakában, légúti megnyilvánulások (orrdujás, orrdugulás, asztma rohamok stb.), Az egészség romlása szárazon szeles időjárás, amikor a pollen eloszlására optimális körülményeket teremtenek, ez szénanáz jelenlétét jelzi (vagyis fokozott érzékenységet a növényi pollenre), és a pollen allergénekkel végzett vizsgálati módszerek szerepelnek az ilyen betegek vizsgálati tervében.
    A hörgőasztma fertőző-allergiás formájában szenvedő betegek esetében az allergiás betegség súlyosbodása jellemző az akut légzőszervi vírusos vagy bakteriális fertőzések során, különösen a hideg évszakban.
    Azt is meg kell kérdezni a beteget az életkörülményekről, kárpitozott bútorok, könyvek, háziállatok, halak, madarak jelenlétéről a lakásban.
    A helyesen összegyűjtött kórtörténet nemcsak tisztázza a betegség természetét, hanem utalást ad annak etiológiájára is, azaz azonosítani egy feltételezett allergént vagy allergének csoportját. Ha a betegség súlyosbodása az év bármelyik szakaszában jelentkezik, de leggyakrabban éjjel, lakás takarításakor, poros helyiségekben, ahol sok „porgyűjtő” található (kárpitozott bútorok, szőnyegek, függönyök, könyvek stb.), Akkor feltételezhetjük, a beteg túlérzékeny a háztartási allergénekre (házpor, könyvtári por). A benne élő háztartási por és piroglifid atkák bronchiális asztmát és egész évben fellépő allergiás rhinitist, ritkábban - bőrkárosodásokat (dermatitiszt) okozhatnak. A betegség egész évben végbemenő tünetei a hideg évszakban (ősz, tél, kora tavasz) a lakások porral való telítettségével és a kullancsok számának növekedésével járnak ebben az időszakban. Ha a betegség tünetei rendszeresen megjelennek az állatokkal (madarak, halak) érintkezve, különösen a cirkuszban, az állatkertben, háziállatok megszerzése után, valamint gyapjúból vagy prémes ruházat viselésekor, ez az állat szőrére vagy a pestére való allergiát jelezheti.. Ezek a betegek nem tolerálják az állati vérfehérjéket (heterológ szérumok, immunoglobulinok stb.) Tartalmazó gyógyszerek beadását. Az ilyen betegek vizsgálati terve magában foglalja a por- és epidermális allergénekkel kapcsolatos vizsgálati módszerek beépítését..
    A felmerült feltételezéseket szükségszerűen speciális vizsgálati módszerekkel - bőr-, provokatív és egyéb tesztekkel - meg kell erősíteni..

    Bőr tesztek
    A szakaszos bőrteszt egy diagnosztikai módszer a test specifikus szenzibilizációjának azonosítására azáltal, hogy egy allergént vezet be a bőrön, és felméri a kialakult ödéma vagy gyulladásos reakció mértékét és jellegét. Az allergénekkel végzett bőrvizsgálatnak különféle módszerei vannak: prik-tesztek, scarification, alkalmazás, intradermális tesztek.
    A bőr vizsgálatához standard sorozatú allergéneket használnak, amelyek 10 000 egység fehérje-nitrogént (PNU) tartalmaznak 1 ml-ben, növényi pollenből, házporból, gyapjúból, bolyhosból, állatok és madarak epidermiszéből, ételekből és más nyersanyagokból.
    A bőrtestek, indikációik és ellenjavallataik felhasználásának technikáját, valamint a bőrvizsgálat eredményeinek értékelését az Ado A. D. (1969) által javasolt, általánosan elfogadott módszer szerint végzik [1]..
    A bőrvizsgálat indikációja az anamnézis adatai, amelyek jelzik az allergén vagy allergéncsoport ok-okozati szerepét a betegség kialakulásában.
    Jelenleg számos nem fertőző és fertőző diagnosztikai allergén ismert..
    A bőrvizsgálat ellenjavallata:

    • az alapbetegség súlyosbodásai;
    • akut intercurrent fertőző betegségek;
    • tuberkulózis és reuma a folyamat súlyosbodása során;
    • idegi és mentális betegség súlyosbodás során;
    • szív-, máj-, vese- és vérbetegségek a dekompenzáció szakaszában;
    • anafilaxiás sokk története;
    • terhesség és szoptatás.

    3 éves kor alatti gyermekek számára nem javasolt teljes allergiavizsgálat.
    A szteroid hormonokkal, bronchospasmolytikus gyógyszerekkel és antihisztaminokkal történő kezelés során (ezek a gyógyszerek csökkenthetik a bőr érzékenységét), valamint a heveny allergiás reakció után javasolt a bőrvizsgálat elvégzése a betegek számára, mivel ebben az időszakban a minták negatívak lehetnek a bőrt szenzibilizáló antitestek kimerülése miatt..
    A bőrvizsgálatok elvégzésének elve azon a tényen alapul, hogy a bőrre felvitt okozati szempontból jelentős allergén kölcsönhatásba lép antigénbemutató sejtekkel és T-limfocitákkal. A bőrben az antigénbemutató sejtek Langerhans-sejtek és makrofágok. Ennek a kölcsönhatásnak az eredménye az érzékenység jelenlétében az allergia mediátorok felszabadulása és egy helyi allergiás reakció kialakulása, amelynek intenzitását az allergológus rögzíti egy speciális allergia vizsgálati lapon..
    A bőrvizsgálatokat általában az alkar belső felületén helyezik el, 5 cm-re visszavonulva a csuklóízülettől. 3-5 cm távolságra a mintákat teszt-kontroll folyadékkal, hisztaminnal és az allergének szokásos víz-só-kivonataival helyezzük a diagnosztizáláshoz.
    Allergiás bőrbetegségek esetén a mintákat olyan helyekre kell tenni, amelyek nem sérültek (hát, has, comb).

    Csepegtetési és alkalmazási tesztek
    Csepegtetési és alkalmazási tesztek indikációi:

    • nagyon magas fokú érzékenység gyanúja;
    • kontakt dermatitis diagnosztizálása;
    • a foglalkozási megbetegedések diagnosztizálása a vegyipar és az olajfinomítás területén dolgozók körében
    • a fotodermatózis diagnosztizálása.

    Az allergének az alkalmazási tesztekben tiszta formában vagy oldatokban kerülnek alkalmazásra olyan koncentrációban, amely az egészséges embereknél nem okoz bőrirritációt..
    Amikor tesztet végeznek a 70% -os alkohollal előkezelt alkar bőrére, cseppet allergénre hordnak (cseppmintát) vagy kb. 1 cm méretű géles darabot hordnak egy allergén oldattal megnedvesítve (alkalmazási minta), rögzítik egy szalaggal, és a reakciót 24–48 óra múlva értékelik (egy hólyagot megmérnek vagy vérbőséget). Ha a reakció 24 óránál korábban jelentkezik, és olyan tünetek jelentkeznek, mint a viszketés, égés, duzzanat, helyi hőmérséklet-emelkedés stb., Akkor az allergén géjét korábban eltávolítják (ha súlyos reakciótünetek jelentkeznek).
    Ha 48 óra elteltével nincs reakció, akkor a mintát negatívnak kell tekinteni..

    Prik tesztek
    A bőrvizsgálat fő módszere az egyedi allergiadiagnosztika szempontjából egy injekciós teszt (tüskés injekció) vagy prik-teszt. Ez az allergiadiagnosztikai módszer mindenütt elfogadott, és számos előnnyel rendelkezik a többi bőrteszttel szemben..
    Kevésbé traumás, mint a hegesedési tesztek; megköveteli a bőr kisebb felületét, ezért nagyobb számú mintát kapnak a betegeknek, és az allergének a szervezetbe kerülnek minimális mennyiségben. A beállítási technika hasonló a szarifikációs minták beállításához. Karcolás helyett egy injekciót készítünk a bőrbe legfeljebb 1–1,5 mm mélyre egy csepp allergén vagy egy teszt-kontroll folyadék segítségével..
    A prik-teszt beállításához speciális prik-lándzsát használjon. Minden egyes allergénhez, tesztkontroll-folyadékhoz és hisztaminhoz külön lacettot kell használni. A mintákat 20 perc elteltével értékelik, és a kapott buborékfóliát megmérik a maximális átmérőn. A szarifikációs tesztekkel összehasonlítva a téves pozitív reakciók sokkal ritkábban reagálnak a szúrástesztre..

    Ijesztési tesztek
    Jelenleg az Európai Allergológiai és Klinikai Immunológiai Akadémia szakértői alacsony információtartalmuk miatt nem javasolják az érelmeszesítő bőrvizsgálat alkalmazását az allergia diagnosztizálására (HJ. Malling, 1993)..
    Noha a szarikozási tesztek meglehetősen specifikusak, felállításukkor hamis pozitív reakciók fordulhatnak elő gyakran. Az 5–6 allergén mintákat egyszerre lehet vizsgálni egy alkaron.
    Ugyanakkor tesztet tesztkontroll folyadékkal (negatív kontroll) és frissen készített hisztamin-oldattal (1:10 000) (pozitív kontroll) a bőr reakcióképességének megítélésére..
    10 perc múlva a cseppeket külön-külön foltozzuk meg minden egyes allergén cseppért, és steril pamutgolyóval ellenőrizzük. A reakciót 20 perc elteltével kiértékeljük.
    A különböző típusú bőrvizsgálatok eredményeinek értékelési skáláját a táblázat tartalmazza. 1-3.

    Intradermális tesztek
    Az intradermális teszt érzékenyebb, mint a szarifikáció, de kevésbé specifikus. Elsősorban bakteriális és gombás eredetű allergénekkel szembeni szenzibilizáció kimutatására használják. Nem fertőző allergénekkel csak akkor végezhetők el, ha az alkalmazás vagy a szarilizálási teszt negatív vagy kétes, és a történelem egyértelműen pozitív..
    Fertőző allergénekkel való vizsgálat olyan betegek körében zajlik, akiknek feltételezett fertőző-allergiás formája van a hörgő asztmában, urticariasában stb. Az ilyen betegek speciális vizsgálata bizonyos nehézségeket okoz, mivel a mögöttes betegségnek gyakran folyamatosan megismétlődő menete van, valamint a krónikus fertőzés több gócának jelenléte miatt..
    A fertőző allergénekkel végzett allergológiai vizsgálat megkezdése előtt el kell érni a betegség remisszióját. E célból a krónikus fertőzés fókusainak előzetes szanatálása.
    Ha gyanú merül fel a gombákkal szembeni szenzibilizációra, két nappal a gomba allergénekkel történő intradermális minták beadása előtt ki kell zárni a mikroszkopikus gombákat tartalmazó termékeket az étrendből. Ilyen termékek lehetnek sajtfajták, kefir, túró, sör, pezsgő, kvass és mások. Nem használhatja ezeket a termékeket a mintavétel napján és másnap, mivel a helyi reakciók aktiválhatók 24 óra elteltével. Nem kívánatos a mintavétel végrehajtása. míg antibakteriális gyógyszereket szed.
    A beállítási technika a következő: az alkar vagy hátulja hajlító felületének bőrét 70% alkohollal kezeljük, majd 0,02 ml fertőző vagy gombás allergént injektálunk tuberkulin vagy inzulin fecskendővel 5 cm távolságra egymástól. Az intradermálisan beadott allergénnek tízszeresen alacsonyabb koncentrációban kell lennie, mint a hegesedési vizsgálat során. Kontrollként teszt-kontroll folyadékot és hisztamin-skarifikáló oldatot intradermálisan injektálunk..
    A fertőző kórokozókkal és gombákkal szembeni allergia közvetlen és késleltetett formában fordulhat elő, ezért a mintázási eredmények eredményeit 20 perc, 24 óra és 48 óra elteltével értékelik, továbbá néhány betegnél megfigyelhetők úgynevezett késleltetett reakciók (6-8 óra után), amelyek szintén figyelembe kell venni (4. táblázat).
    Az intradermális tesztek kevésbé specifikusak és gyakran téves pozitív eredményeket adnak, továbbá nemkívánatos szövődményeket válthatnak ki, tehát az intradermális tesztek során az allergének száma nem haladhatja meg a 3-5-et.
    A bőrtestek információtartalma számos tényezőtől függ, amelyek kapcsán lehetséges a bőrteszt hamis pozitív és téves-negatív eredményei is..
    A bőrtestek hamis negatív eredményeinek fő okai:

    • az allergén inaktiválása a nem megfelelő tárolás eredményeként;
    • lejárt allergének használata;
    • a bőr reakcióképességének csökkenése (idős és szenilis kor, a neuroendokrin rendszer betegségei stb.);
    • antihisztaminok és glükokortikoszteroid gyógyszerek, anti-mediátorok és más gyógyszerek, amelyeket a beteg a bőrrel történő tesztelése során vesz a hisztamin felszabadulása a célsejtekből vagy csökkentheti a bőr reakcióképességét céljából;
    • a bőrvizsgálat technikájának megsértése;
    • a bőrvizsgálat 4 héttel korábbi szisztémás reakció után (antitestek kimerülése);
    • kisgyermekkori.

    A bőrvizsgálat hamis pozitív eredményeinek fő okai:

    • a bőrvizsgálat technikájának megsértése;
    • az allergén szennyeződése idegen szennyeződésekkel a nem megfelelő tárolás során;
    • urticarian dermographism.

    A bőrvizsgálat eredményeit egy speciális allergológiai vizsgálat speciális lapján rögzítik, amely nemcsak a vizsgálat dátumát és az allergén típusát jelzi, hanem az allergén gyártási számát és gyártóját is.

    Provokatív tesztek
    A provokatív tesztek meglehetősen megbízható diagnosztikai módszer. Ezeket akkor használják, ha nincs különbség a bőrvizsgálat előzményei és eredményei között. Az allergén típusától és a testbe jutásának módjától függően megkülönböztetjük a kötőhártya, az orr, az inhaláció és a szublingvális provokatív teszteket. Magatartásuk ellenjavallata megegyezik a bőrvizsgálattal..
    A kötőhártya provokatív tesztet használják az allergiás kötőhártyagyulladás diagnosztizálására és annak kialakulását okozó allergének azonosítására..
    A technika a következő: a kötőhártya zsákba az alsó szemhéjat megnyomva csepegtessen be 1-2 csepp teszt-kontroll folyadékot. A kötőhártya változásainak hiányában 15-20 perc elteltével az allergénkel folytatják a vizsgálatot. Az allergént (1-2 csepp) olyan koncentrációban adják be, amely gyengén pozitív bőrteszt eredményezett. Pozitív reakcióval, kiürülés, kötőhártya hyperemia, a szemhéjak viszketése.
    Nazális provokációs tesztet alkalmaznak az allergiás rhinitis diagnosztizálására..
    A megvalósítás technikája: 2 csepp teszt-ellenőrző folyadékot pipettával injektálnak az orr egyik felébe. Az allergiás gyulladás tüneteinek hiányában 15–20 perc elteltével 2 csepp allergént kell beadni 1: 100 (100 PNU) hígításban, vagy ha nagyon magas fokú szenzibilizáció gyanúja áll fenn, 1: 1000 (10 PNU). Pozitív reakció esetén tüsszögés, orrviszketés, orrfolyás jelentkezhet.
    Az inhalációs provokációs tesztet általában alkalmazzák a hörgő asztma kimutatására, főleg differenciáldiagnózis (bronchiális asztma, obstruktív bronchitis stb.) Céljából, csak remissziós szakaszban, álló helyzetben. A teszt beállítása előtt előzetesen feljegyzik a külső légzésfunkció paramétereit (kényszerű kilégzési térfogat az első másodperc alatt - FEV1, FVC, Tiffno együttható). Alapérték FEV1 legalább a megfelelő érték 70% -ának kell lennie.
    Ezután az alany először belélegezi a kontroll oldatot, majd az allergén oldatot, a minimális koncentráció dózisától kezdve egészen azon, amely észrevehető reakciót vált ki. A teszt pozitívnak tekinthető, ha a FVC és a Tiffno index több mint 20% -kal csökken..
    Az Európai Légzésvédő Társaság szakértői által javasolt javaslat szerint a bronchiális asztma inhalációs provokációs vizsgálatát adagolófúvókás porlasztóval végezzük a következő módszer szerint: először a hígító folyadék inhalálását végzik, majd az allergén kétszeres hígítását: 1: 1024; 1: 512... 1:16. Az allergén következő belélegzése után 10 percenként háromszor regisztrálják a FEV-t1. A FEV allergén utolsó injekciója után1 10 percenként egy órán át, majd 90, 120 perc után, majd óránként 7 órán át. A teszt pozitívnak tekinthető a FEV csökkenésével1 Az eredeti érték legalább 20% -a.
    Provokatív inhalációs teszt karbacholinnal (acetilkolin) használják a hörgő asztma diagnózisának megerősítésére..
    A provokatív inhalációs teszt hideg levegővel a nem-specifikus hörgők túlreaktivitásának vizsgálatára szolgál.
    A szublingvális provokatív tesztet élelmiszer- és gyógyszer-allergia diagnosztizálására használják. Allergént alkalmaznak a hyoid terület nyálkahártyájára. Élelmiszer-allergia esetén 1:10 hígítású természetes termékeket, kábítószer-allergia esetén - 1 / 8–1 / 4 oldott anyag egyszeri adagját használják. A teszt akkor tekinthető pozitívnak, ha hyperemia, duzzanat, viszketés van a hyoid területén, valamint megnövekedett pulzus, tüsszentés, köhögés.
    A gyógyszerallergiák diagnosztizálására leukocita-gátlási tesztet (TTEL) is alkalmaznak. Ez a teszt nagyon specifikus és biztonságos..
    A TTEL in vivo alkalmazásának indikációi:

    • a kábítószer-allergia konkrét diagnosztizálására olyan betegek esetében, akiknél a kórtörténetben drog intolerancia fordult elő, és indikációik vannak azok használatára;
    • atópiás betegségben szenvedő betegeknél (hörgő asztma, széna láz, atópiás dermatitis) antibakteriális és egyéb gyógyszerek alkalmazására vonatkozó indikációkkal;
    • a kábítószer-allergia megerősítése a foglalkozási megbetegedések klinikájában.

    Abszolút ellenjavallatok a TTEL in vivo alkalmazásához:

    • fogak teljes hiánya a szájüregben;
    • a szájüreg gyulladásos betegségeinek akut stádiuma (akut parodontitis, mandulagyulladás, szájgyulladás stb.);
    • akut allergiás betegségek.

    A kutatáshoz vízoldható gyógyszerformákat használnak. A gyógyszer kezdeti koncentrációja 1 μg / ml. Egy nap alatt csak egy vizsgálat végezhető el egyetlen gyógyszerrel és egy koncentrációval. Antihisztaminok és glükokortikoszteroid gyógyszerek, immunszuppresszánsok szedésekor nem javasolt a vizsgálat. A vizsgát 1,5 órán át tervezték, és 2 szakaszból áll. Ha a leukocita sejteket a vizsgálathoz összegyűjtött anyagban megszámoljuk, a leukociták (neutrofilek) számának több mint 30% -os csökkenését pozitív tesztnek tekintjük. A teszt eredményeit egy speciális űrlapon rögzítik, amelyet beágyaztak a beteg kórtörténetébe.

    Laboratóriumi diagnosztikai módszerek
    Az allergiadiagnosztikai laboratóriumi módszerek kinevezésének fő indikációi, amelyeket in vitro végeznek, a következők:

    • kisgyermekkori;
    • magas szenzibilitással járó betegek;
    • a betegség folyamatos relapszusa remissziós időszakok nélkül;
    • képtelenség az antihisztaminok és más gyógyszerek megsemmisítésére;
    • többértékű szenzibilizáció, ha nincs lehetőség azonnali in vivo vizsgálat elvégzésére az összes feltételezett allergénre korlátozott vizsgálati időszak alatt;
    • élesen megváltozott bőrreaktivitás;
    • hamis pozitív vagy hamis negatív eredmény a bőrvizsgálat során;
    • urticarian dermographism.

    A specifikus in vitro diagnosztikai módszerek fő előnyei a következők:

    • biztonság a beteg számára;
    • a vizsgálat lehetősége abban az esetben, ha a beteg nagy távolságra van az allergiától, és csak a beteg szérumát szállítják;
    • nem elegendő vér a kutatáshoz.

    A klinikai gyakorlatban a következő in vitro specifikus diagnosztikai módszereket használják leggyakrabban:

    • enzimhez kapcsolt immunszorbens vizsgálat (ELISA) a specifikus IgE meghatározására (1. ábra);
    • radioaktív allergének vizsgálata (RAST) a specifikus IgE kimutatására (2. ábra);
    • közvetett bazofil teszt (Shelley-teszt);
    • közvetlen bazofil teszt (Shelley teszt);
    • a hisztamin specifikus felszabadulásának reakciója a beteg perifériás vérének bazofiljeiből (Skov P., S. Norne, B. Weeke szerint).
    • Az ELISA, egy radioallergosorbens teszt, közvetett és közvetlen bazofil teszt kiegészítő módszer a specifikus allergia diagnosztizálására az azonnali reakciók során.

    Az enzimhez kapcsolt immunszorbens vizsgálat jelenleg a leggyakoribb kutatási módszerek egyike. ELISA alkalmazásával meghatározzuk az allergén-specifikus IgE mennyiségét a beteg vérében.
    A módszer alapelve az, hogy a vizsgálat első szakaszában a teszt allergén kovalensen kötődik a szilárd fázishoz (papírlemez, aktivált polimer stb.).
    A beteg szérumának hozzáadásakor a szilárd fázisra rögzített allergén kötődik az ellenanyaghoz, ha az adott allergénnek megfelelő antitestek vannak a szérumban. A nem kötött IgE lemosása után hozzáadunk fluorokrómmal jelölt anti-IgE antitesteket (torma-peroxidáz, béta-galaktozidáz stb.). Komplexképződésre kerül sor: szilárd fázisú allergén + specifikus IgE + anti-IgE antitestek (anti-IgE antitestek). A nem kötött antitesteket eltávolítják.
    A specifikus IgE-kötés szintjét a lumineszcencia intenzitása határozza meg (a reakciót az 1–4. Fokozat tartományában értékelik). Minél magasabb a lumineszcencia sebessége a negatív kontrollhoz viszonyítva (szérum, amelyben nincs specifikus IgE antitest), annál specifikusabb IgE a beteg szérumában. A reakció sajátos természetét a pozitív kontroll alapján (4. fokozatú IgE-kötés) vesszük figyelembe. Ennek a módszernek az az értéke, hogy kis mennyiségű szérumot igényel, azonnal nagyszámú allergén felhasználásával..

    Radio Allergia szorbens teszt (RAST)
    Ennek a módszernek a segítségével a vérben az allergén-specifikus IgE mennyiségi meghatározását is elvégezzük. Egy papírlemezhez kovalensen kapcsolt allergén reagál a beteg vérének adott IgE-jével. A nem-specifikus IgE mosása után radioaktívan jelölt (125I) anti-IgE-t adunk hozzá. Specifikus IgE komplex + jelölt anti-IgE alakul ki. Ennek a komplexnek a radioaktivitását gamma számlálóval mérjük. Minél nagyobb a radioaktivitás, annál nagyobb az IgE-tartalom a beteg vérében.
    A teljes allergén-specifikus IgE mérésére standard allergén készleteket (paneleket) használnak.
    Az IgE meghatározására a betegek vérszérumában a kemilumineszcencia hatásán alapuló módszereket kell használni. A teszt meghatározásának elve megegyezik az ELISA és az allergiát elnyelő teszttel, azonban a fotoreagenseket (A, B, C, D) használják a reakció indikátoraként, amelynek lumineszcenciáját (a MAST-CLA teszt (Cl1)) egy Polaroid filmre, egy luminométerre rögzítik. a fotométeren (3. ábra).
    A specifikus antigéneket ELISA-teszttel detektáljuk (4. ábra).
    Az allergiás reakciók diagnosztizálására, a késleltetett túlérzékenységi mechanizmusok szerint, például élelmezési és gyógyszer-allergiák esetén, a limfocita robbanás transzformációs tesztet kell használni (5. ábra).

    Közvetett bazofil teszt (Shelley-teszt)
    Ez a teszt a beteg szérumának és egy specifikus allergénnek kölcsönhatása eredményeként kialakuló bazofil morfológiai változások vizsgálatán alapul. A semleges vörös festék szelektíven megfesti a basofil granulátumot téglavörös színben, amely lehetővé teszi, hogy megkülönböztessük más sejtektől. A reakciót mikroszkóp alatt, merülő rendszerrel megfigyeltük..
    A változatlan basofilek kerekítve vannak; a festékkel festett szemcsék a cellában találhatók.
    A pozitív reakció a sejtek deformációjában, ál állatok kialakulásában, a szemcsék fokozott mozgásában és ritka esetekben a szemcsék kilépésében a sejtből nyilvánul meg. Mindegyik készítményben 40 bazofilt megszámolunk, a morfológiailag megváltozott sejtek százalékát kiszámoljuk mind a kísérletben, mind a kontrollban.
    Három reakciófokozatot lehet feltételesen megkülönböztetni: gyenge (a megváltozott bazofilok százalékos aránya a kísérletben 10% -kal meghaladja a kontrollnál), közepes (15% -kal) és élesen pozitív (legalább 20% -kal). Minden esetben a bazofilok legnagyobb, nem specifikus válaszú kontroll eredményeket kell érteni..

    Közvetlen bazofil teszt (Shelley teszt)
    Ez a teszt egy allergiás betegségben szenvedő beteg perifériás vérének morfológiai változásainak vizsgálatán alapszik, amikor egy specifikus allergénnel kölcsönhatásba lépnek. A reakció értékelését a közvetett bazofil tesztben leírtakhoz hasonlóan végezzük..
    A humán perifériás vér basofiljeiből származó hisztamin felszabadulásának reakciója (P.Scov és munkatársai szerint) a hisztamin felszabadulásának százalékán alapul, miután a bazofil sejteket specifikus allergénekkel kezelték.
    Ezek a módszerek csak az érzékenyítés állapotát tárják fel, azaz az azonnali túlérzékenységű antitestek jelenléte azt jelzi, hogy az alany érintkezett ezzel az allergéntel. Ezek a tesztek nem lehet vitathatatlan bizonyíték arra, hogy az allergénre allergiás reakció alakul ki, mivel az allergiás reakció előfordulása és megnyilvánulása nem elegendő csupán az érzékenyítés és az allergén jelenléte. Számos további feltételre van szükség. A laboratóriumi diagnosztikai módszereket további intézkedéseknek tekintik az in vivo tesztelés kérdéses eredményeinek tisztázása érdekében. A diagnózisnak elsősorban az allergiás kórtörténet adatain, a beteg vizsgálatán, a megfigyelhető bőrtesztek és provokatív tesztek eredményein, valamint a beteg általános klinikai vizsgálatán alapuló adatoknak kell alapulniuk..

    Klinikai és laboratóriumi kutatási módszerek
    A klinikai és laboratóriumi kutatási módszereknek tartalmazniuk kell: klinikai vérvizsgálatot (vörösvértestek és fehérvérsejtek száma, Hb, színindikátor, ESR, retikulocitákat, vérlemezkéket, basofileket, eozinofileket, stab leukocytákat, szegmentált fehérvérsejteket, limfocitákat, vérmonocitákat számoló hemogrammot számolnak), indikációk (teljes fehérje, fehérjefrakciók, fibrinogén, maradék nitrogén, karbamid, húgysav, kreatinin, teljes bilirubin, közvetlen, közvetett, AST, ALT, koleszterin, LDH, béta lipoproteinek, timol teszt, szublimációs teszt, C-reaktív protein, szeromucoid, alfa-amiláz, foszfolipidek stb. indikációk szerint), vizeletanalízis, bakteriológiai vizsgálatok (a flóra oltása a fertőzés fókuszairól a flóra antibakteriális szerekkel szembeni érzékenységének meghatározásával, a bél mikroflóra meghatározásával stb. indikációk szerint), szakemberek vizsgálata, valamint radiológiai, funkcionális és műszeres (EKG, FVD, a hasüreg és a kis medence ultrahangja stb. a javallatok szerint ) kutatási módszerek.
    Összegzésképpen meg kell jegyezni, hogy az allergiás betegségek sikeres diagnosztizálásához kiemelkedő fontosságú a beteg élet- és kórtörténetének adatainak megfelelő elemzése és megfelelő értékelése, valamint az allergiás, farmakológiai és táplálkozási előzmények összegyűjtése, amelyek gyakran lehetővé teszik a helyes diagnózis megállapítását az első, a beteggel való találkozás után..
    Komplex esetekben csak a klinikai lefolyás sajátosságait és az allergiás betegség kialakulásának lehetséges mechanizmusait figyelembe vevő átfogó vizsgálat képes megoldani a diagnosztizálása során felmerült problémákat..

    Irodalom
    1. Ado A.D. Nem fertőző eredetű allergének használata allergiás betegségben szenvedő betegek speciális diagnosztizálására és desenzitizációjára. Módszertani levél. M.: A Szovjetunió Egészségügyi Minisztériuma, 1969.
    2. Drannik G.N. Klinikai immunológia és allergia. Odessa: AstroPrint, 1999; 416-23.
    3. Pytsky V. I., Adrianova N. V., Artomasova A. V. Allergiás betegségek. M.: Triád - X, 1999; 102-12.
    4. Royt A., Brostoff J., Mail D. Immunology. M.: Mir, 2000; 424-7.
    5. Sokolova TS, Roshal N.I. M.: Orvostudomány. 1990; 17-40.
    6. Fedoseeva V.N., Poryadin G.V. et al., Allergiológiai és klinikai immunológiai útmutatások. Lviv, 1997; 189-93.